Diagnostic nutritionnel selon le substrat : mesurer pH et EC
Une feuille jaune ou tachée signale un trouble, mais ne dit pas où il se situe. Seule une mesure de la solution au niveau des racines décide s’il se trouve dans la zone racinaire. Cette solution de la zone racinaire s’obtient différemment selon le substrat, d’où le nom de diagnostic nutritionnel selon le substrat. En terre et en coco, on mesure l’eau de drainage, le « drain » dans le jargon des growers, c’est-à-dire l’eau qui sort par le bas du pot. En laine de roche, on prend l’écoulement du pain, et en hydroponie le réservoir. On mesure à chaque fois le pH et la conductivité, en abrégé EC, qui saisit l’ensemble des sels dissous.
Comment mesurer le pH et la conductivité dans le pot ?
On mesure avec le PourThru, qui consiste à verser de l’eau distillée après l’arrosage et à recueillir l’eau de drainage. Pour cela, on attend 30 à 60 minutes après l’arrosage normal, puis on verse l’eau distillée par le haut, la plante restant dans son pot. Pour un pot d’environ 3,8 litres, cela fait 150 ml, pour environ 11,4 litres 350 ml, et il doit en sortir environ 50 ml, assez pour la sonde de mesure. Pour des pots plus grands, aucune quantité n’est étayée.
L’EC s’exprime en millisiemens par centimètre, en abrégé mS/cm, et indique la somme des sels, mais pas lequel manque. Pour le cannabis en croissance, le groupe de NC State, une équipe de spécialistes de la nutrition des plantes de la North Carolina State University, indique 2,0 à 3,0 mS/cm après PourThru. Pour l’extrait saturé, il indique 1,3 à 2,0 mS/cm. Pour celui-ci, on sature tout juste 200 à 300 ml de substrat de la zone racinaire avec de l’eau distillée et on filtre après 30 minutes. Aucun essai n’a vérifié ces valeurs sur le cannabis, et les valeurs plus élevées des plantes ornementales ne sont pas établies pour le cannabis. Les deux méthodes donnent des chiffres différents pour le même pot, et une valeur isolée en dit moins que l’évolution.
- Mesurez chaque fois à la fois la solution d’arrosage et l’eau de drainage.
- Mesurez cinq à dix pots séparément et prenez la moyenne.
- Utilisez toujours la même méthode.
- Notez les valeurs avec la date et comparez l’évolution.
- Si l’EC est sous la plage, vérifiez la quantité d’engrais.
- Si elle est au-dessus et continue de monter, faites passer plus d’eau ou rincez à l’eau claire.
- Vérifiez l’effet avec la mesure suivante selon la même méthode.
Quel pH convient à mon substrat ?
Le pH indique l’acidité d’une solution, et sa plage cible se situe entre pH 5,4 et 6,5 selon le substrat, plus haut en terre de jardin. Sous pH 5,0, le chanvre pousse nettement moins bien. En tourbe avec perlite, il n’a donné à pH 3,0 que 23,9 g de matière sèche aérienne, et à partir de pH 5,0 il en a donné 36,6 à 39,2 g. Pour le cannabis en substrat, le groupe de NC State indique 5,8 à 6,2 comme plage cible plus étroite. Dans le tableau, « sans terre » désigne un substrat sans sol minéral, comme la tourbe, le coco ou la laine de roche. Les sources du tableau n’indiquent toutefois pas où elles ont mesuré le pH. En tourbe et en coco, le pH de l’eau de drainage était 0,4 à 0,6 unité plus élevé que directement dans le substrat, mesuré sur de la laitue. D’après une fiche technique, les trois méthodes usuelles donnent au contraire des valeurs semblables, l’écart est donc controversé.
| Substrat | pH au niveau de la racine | Origine |
|---|---|---|
| Tourbe et terreau à base de tourbe | 5,5–6,5, pas sous 5,0 | Essai sur le chanvre |
| Substrats sans terre en général, coco compris | 5,4–6,2 | Fiche technique horticole |
| Laine de roche | 5,5–6,5 | Manuel de culture sous serre |
| Hydroponie | 5,5–6,5 | Manuel de culture sous serre |
| Terre de jardin | 6,0–7,5 | Manuel de culture sous serre |
- Mesurez toujours le pH au même endroit, dans l’eau de drainage ou directement dans le substrat.
- Si le pH baisse d’une mesure à l’autre, cherchez la cause avant que 5,0 ne soit franchi vers le bas.
- Quel nutriment se bloque à quel pH, l’article sur le blocage des nutriments l’indique.
Pourquoi mon coco montre-t-il une carence en calcium alors que je fertilise assez ?
Un coco non tamponné peut retenir le calcium sur ses sites d’échange, c’est-à-dire sur des points chargés de la fibre qui fixent des nutriments et les échangent contre d’autres. Un coco non lavé peut y porter beaucoup de potassium et de sodium, et le calcium et le magnésium de la solution s’y fixent plus fortement et les évincent tous deux. La solution au niveau de la racine s’appauvrit ainsi en calcium et en magnésium et s’enrichit en potassium. Un échantillon lavé portait au contraire surtout du calcium et du magnésium, l’origine et le lavage comptent donc aussi. Il est seulement déduit, et non mesuré, que le potassium du coco et de l’engrais s’additionne et freine l’absorption du calcium. Dans une comparaison, le cannabis a poussé moins grand en coco qu’en tourbe, et une variété sur deux a donné 3,84 g de fleurs par plante en coco, contre 8,56 g en tourbe. Les chercheurs y voyaient une cause liée au régime hydrique, car le coco retient beaucoup d’air et peu d’eau facilement disponible.
Pour tamponner, on fait tremper le coco avant usage dans une solution de nitrate de calcium, puis on le rince. Dans l’essai, il s’agissait de jusqu’à 150 g de nitrate de calcium pour 1,5 kg de coco dans 15 litres d’eau, avec un trempage de 12 à 72 heures. Le calcium fixé est alors passé de 3,60 à 58,17 cmol par kilogramme, soit par le calcul environ seize fois plus, tandis que le potassium tombait de 19,59 à 6,96 cmol par kilogramme. L’unité cmol compte les charges fixées par kilogramme de coco. L’eau de drainage a atteint jusqu’à 12,12 mS/cm pendant le tamponnage et se situait sous 1 mS/cm après le rinçage. On n’a pas mesuré si des racines en croissance ouvrent de nouveaux sites libres dans un coco tamponné.
- Achetez du coco tamponné ou tamponnez vous-même un coco non tamponné au nitrate de calcium.
- Après le tamponnage, rincez à fond et mesurez l’EC de l’écoulement.
- Vérifiez un engrais riche en potassium en coco.
- Adaptez la routine d’arrosage spécialement au coco au lieu de la reprendre de la terre.
- L’aspect de la carence en calcium est décrit dans l’article sur le calcium.
- Vérifiez sur les nouvelles pousses si le remède agit.
Pourquoi le pH baisse-t-il dans le coco avec une eau douce ?
Le pH baisse parce qu’une eau douce n’apporte presque aucun tampon contre l’acide. L’acide est libéré par la racine elle-même dès qu’elle absorbe des cations, c’est-à-dire des particules nutritives chargées positivement comme le potassium ou l’ammonium. Ce processus n’a pas été mesuré spécifiquement sur le cannabis. Avec une eau très douce, le coco fixe en outre des nutriments de l’engrais, et une carence en calcium peut devenir visible.
Le sol minéral tamponne au contraire par ses sites d’échange, qui portent surtout du calcium et du magnésium. De nombreux sites d’échange stockent des nutriments et freinent les variations rapides de pH, mais cela n’a pas été mesuré pour le terreau à base de tourbe.
- Notez le pH de l’eau de drainage à chaque mesure.
- Avec une eau très douce, augmentez un peu la quantité de nutriments, pour que le coco ne fixe pas tout l’apport.
- Comment couper ou tamponner une eau douce, l’article sur le calcul de la solution nutritive l’explique.
À quoi faire attention en laine de roche et en hydroponie ?
La laine de roche et l’hydroponie ne retiennent presque pas de nutriments, mais la solution au niveau de la racine change par l’absorption et par les appoints. La laine de roche neuve, un pain de roche fondue, apporte un pH d’environ 7,5 au départ. Sous une nutrition au nitrate pur, elle se situait chez la laitue à pH 7,6 à 8,1, et l’EC montait. Dans les cultures sous serre, on prépare la solution d’arrosage vers pH 5,3, pour qu’un pH de 5,5 à 6,5 s’établisse au niveau de la racine. Le pH y est piloté par l’ammonium, l’une des deux formes d’azote. Si le pH est trop bas, on donne moins d’ammonium, s’il est trop haut davantage, au total 5 à 15 % de l’azote. Aucune mesure n’existe pour le prétraitement de la laine de roche chez le cannabis.
En hydroponie, les racines baignent dans la solution nutritive, et le réservoir est la solution au niveau de la racine. En hydroponie en circuit fermé, où la solution est seulement complétée, le soufre et le potassium ont augmenté, de même que le bore et le cuivre. Le manganèse, le molybdène et le zinc sont au contraire tombés bien en dessous de l’apport, mais les valeurs foliaires restaient suffisantes. Quand on complétait avec de l’eau de pluie entre deux renouvellements hebdomadaires, les teneurs montaient jusqu’au double de la préparation.
- En laine de roche, mesurez chaque jour le pH et l’EC au goutteur et dans l’écoulement.
- Si un nutriment s’écarte d’un quart de la cible au laboratoire, modifiez la solution d’arrosage de 10 à 15 %.
- Quelle quantité d’ammonium le cannabis tolère, l’article sur l’azote l’indique.
- Si l’écoulement est réutilisé, prenez une eau d’arrosage pauvre en sodium.
- En hydroponie, renouvelez régulièrement toute la solution ou faites-la analyser nutriment par nutriment.
- En cas de carence en fer dans le réservoir, vérifiez le chélate. Un chélate est une molécule qui maintient le fer en solution.
- Quel chélate convient à quel pH, l’article sur le fer l’indique.
Quand une analyse foliaire aide-t-elle ?
Une analyse foliaire aide quand le pH et l’EC sont corrects et que la plante montre malgré tout un problème. Elle montre ce que la plante absorbe, l’analyse de la solution au contraire ce qui est offert au niveau de la racine. On prélève habituellement la plus jeune feuille entièrement développée, et ce dès le premier symptôme. En cas de soupçon d’excès de fer ou de manganèse, les feuilles inférieures atteintes en font aussi partie. Le gerbera montre combien les étages foliaires peuvent différer : les feuilles inférieures y contenaient 3 080 mg de fer par kilogramme de matière sèche, la plus jeune feuille développée seulement 752 mg.
Une valeur foliaire seule peut tromper, car sans apport d’azote, l’azote foliaire du cannabis restait en haut comme en bas proche du témoin. Comparé aux plages d’une autre étude, l’échantillon indiquait une carence en calcium ou en magnésium. Les valeurs foliaires baissent de toute façon avec la maturité, si bien qu’un échantillon de floraison ne correspond pas à des valeurs de référence de la croissance. Vers la fin de la floraison, les feuilles inférieures jaunissent en outre même avec un apport complet.
- Avant de grands changements du plan de fertilisation, faites faire une analyse foliaire.
- Notez le moment, la phase et l’étage foliaire de l’échantillon.
- Si l’aspect est inégal, échantillonnez séparément les feuilles du haut et du bas.
- Lisez ensemble l’aspect des feuilles, la solution et la valeur foliaire.
- Les différents symptômes de carence sont décrits dans l’article sur les carences et les surdosages.
- L’article sur la sénescence distingue le jaunissement dû à l’âge de la carence.
Sources
- Camberato, Lopez et Mickelbart 2009, mesure du pH et de la conductivité dans les substrats sans terre, Purdue Extension HO-237-W
- van der Lugt (dir.) 2016, solutions nutritives pour cultures sous serre, Eurofins Agro et Wageningen University & Research
- Veazie et collègues 2025, pH du substrat et apport d’oligo-éléments chez Cannabis sativa, Agrosystems, Geosciences & Environment
- Whipker, Smith, Cockson et Landis 2019, le pH optimal pour le cannabis, Cannabis Business Times
- Veazie, Cockson et Whipker 2025, brûlure des bords des feuilles de cannabis, Cannabis Business Times
- Veazie, Cockson et Whipker 2026, la carence en calcium chez le cannabis, Cannabis Business Times
- Langenfeld, Skabelund, Heins et Bugbee 2024, mesure du pH directement dans le substrat sans terre, Frontiers in Plant Science
- Whipker et autres 2016, diagnostiquer un pH bas du substrat, e-GRO Alert 5(15)
- Gbollie, Mwonga et Kibe 2021, dose de nitrate de calcium et durée de trempage du substrat de coco, Journal of Agricultural Chemistry and Environment
- Monsalve Camacho, Luque Sanabria et Sánchez Rodríguez 2026, chimie des nutriments dans les substrats mixtes coco-minéral, Advances in Horticultural Science
- Burgel, Hartung et Graeff-Hönninger 2020, croissance, rendement et cannabinoïdes de deux variétés de cannabis dans différents substrats, Horticulturae
- CANNA Research 2015, résolution de problèmes en coco
- PT Horticulture 2016, ce qu’est la capacité d’échange cationique et pourquoi elle compte
- Nerlich et Dannehl 2021, propriétés chimiques des substrats organiques et laitue, Frontiers in Plant Science
- Malík et Tlustoš 2025, substrats sans terre pour la culture du cannabis, Agriculture
- Llewellyn, Golem, Jones et Zheng 2023, carences en éléments isolés en hydroponie, Plants
- Hershkowitz, Westmoreland et Bugbee 2025, phosphore et conductivité en hydroponie, Frontiers in Plant Science