Diagnóstico de nutrientes por meio de cultivo: medir pH e EC

Uma folha amarela ou manchada indica um distúrbio, mas não revela onde ele está. Só uma medição da solução junto às raízes decide se está na zona radicular. Esta solução da zona radicular obtém-se de forma diferente conforme o meio, por isso o procedimento chama-se diagnóstico de nutrientes por meio de cultivo. Em terra e fibra de coco mede-se o lixiviado, no jargão de cultivo drain, ou seja, a água que sai por baixo do vaso. Na lã de rocha usa-se o escoamento da placa e em hidroponia o tanque. Em cada caso medem-se o pH e a condutividade elétrica, abreviada EC, que abrange todos os sais dissolvidos em conjunto.

Como medir o pH e a condutividade no vaso?

Mede-se com o PourThru, em que se deita água destilada depois da rega e se recolhe o lixiviado. Para isso espera-se 30 a 60 minutos depois da rega normal e deita-se então a água destilada por cima, com a planta no vaso. Num vaso de cerca de 3,8 litros são 150 ml, num de cerca de 11,4 litros são 350 ml, e devem sair cerca de 50 ml, o suficiente para a sonda de medição. Para vasos maiores não há quantidade documentada.

A EC indica-se em milisiemens por centímetro, abreviado mS/cm, e mostra a soma dos sais, mas não qual deles falta. Para a canábis na fase vegetativa, o grupo da NC State indica 2,0 a 3,0 mS/cm pelo PourThru. Este grupo é uma equipa de especialistas em nutrição vegetal da North Carolina State University. Para o extrato de saturação indica 1,3 a 2,0 mS/cm. Para o obter, satura-se 200 a 300 ml de substrato da zona radicular com água destilada até ao ponto exato e filtra-se ao fim de 30 minutos de espera. Estes valores não foram verificados na canábis em nenhum ensaio, e os valores mais altos para plantas ornamentais não estão documentados para a canábis. Os dois métodos dão números diferentes para o mesmo vaso, e um valor isolado diz menos do que a evolução.

Medir de cada vez tanto a solução de rega como o lixiviado.
Medir cinco a dez vasos em separado e tirar a média.
Usar sempre o mesmo método.
Registar os valores com a data e comparar a evolução.
Se a EC estiver abaixo do intervalo, verificar a quantidade de adubo.
Se estiver acima e continuar a subir, deixar passar mais água ou lavar com água limpa.
Verificar o efeito com a medição seguinte, pelo mesmo método.

Que pH convém ao meio de cultivo?

O pH indica a acidez de uma solução. O seu intervalo-alvo situa-se, conforme o meio, entre pH 5,4 e 6,5, e no solo de jardim é mais alto. Abaixo de pH 5,0 o cânhamo cresce claramente pior. Em turfa com perlite produziu a pH 3,0 apenas 23,9 g de matéria seca da parte aérea, e a partir de pH 5,0 foram 36,6 a 39,2 g de matéria seca. Para a canábis em substrato, o grupo da NC State indica 5,8 a 6,2 como intervalo-alvo mais estreito. Na tabela, «sem solo» designa um meio sem solo mineral, como turfa, fibra de coco ou lã de rocha. As fontes da tabela não indicam, porém, onde mediram o pH. Em turfa e fibra de coco, o pH no lixiviado ficou 0,4 a 0,6 unidades acima do valor medido diretamente no substrato, numa medição em alface. Segundo uma ficha técnica, os três métodos habituais dão pelo contrário valores semelhantes, e a diferença é portanto controversa.

Meio	pH junto à raiz	Origem
Turfa e terra de vaso à base de turfa	5,5–6,5, não abaixo de 5,0	ensaio com cânhamo
Substratos sem solo em geral, incluindo fibra de coco	5,4–6,2	ficha técnica de horticultura
Lã de rocha	5,5–6,5	manual de estufa
Hidroponia	5,5–6,5	manual de estufa
Solo de jardim	6,0–7,5	manual de estufa

Medir o pH sempre no mesmo sítio, no lixiviado ou diretamente no substrato.
Se o pH descer de medição para medição, procurar a causa antes que fique abaixo de pH 5,0 no vaso.
Que nutriente fica bloqueado com que pH, explica o artigo sobre o bloqueio de nutrientes.

Porque é que a fibra de coco mostra carência de cálcio apesar de adubação suficiente?

A fibra de coco não tamponada pode reter cálcio nos seus locais de troca. São pontos com carga na fibra que ligam nutrientes e os trocam por outros. A fibra de coco não lavada pode trazer aí muito potássio e sódio. O cálcio e o magnésio da solução ligam-se com mais força e deslocam ambos. A solução junto à raiz fica assim mais pobre em cálcio e magnésio e mais rica em potássio. Uma amostra lavada trazia, pelo contrário, sobretudo cálcio e magnésio, e por isso a origem e a lavagem também contam. Apenas deduzido e não medido é que o potássio da fibra de coco e do adubo se somem e travem a absorção de cálcio. Numa comparação, a canábis cresceu menos em fibra de coco do que em turfa. Uma de duas variedades deu em fibra de coco 3,84 g de flores por planta e em turfa 8,56 g por planta. Os investigadores atribuíram a causa ao balanço hídrico, porque a fibra de coco retém muito ar e pouca água facilmente disponível.

Para tamponar, deixa-se a fibra de coco de molho numa solução de nitrato de cálcio antes da utilização e lava-se depois. No ensaio usaram-se até 150 g de nitrato de cálcio para 1,5 kg de fibra de coco em 15 litros de água, com 12 a 72 horas de molho. O cálcio ligado subiu de 3,60 para 58,17 cmol por quilograma, por cálculo cerca de dezasseis vezes mais. O potássio desceu de 19,59 para 6,96 cmol por quilograma. A unidade cmol conta as cargas ligadas por quilograma de fibra de coco. O lixiviado chegou durante a tamponagem a 12,12 mS/cm e ficou depois da lavagem abaixo de 1 mS/cm de condutividade. Não foi medido se as raízes em crescimento abrem novos locais livres na fibra de coco tamponada.

Comprar fibra de coco tamponada ou tamponar a não tamponada com nitrato de cálcio.
Depois de tamponar, lavar bem e medir a EC do escoamento.
Verificar se o adubo usado em fibra de coco é rico em potássio.
Ajustar a rotina de rega à fibra de coco em vez de a copiar da terra.
O quadro da carência de cálcio está descrito no artigo sobre o cálcio.
Verificar no crescimento novo se a correção funciona.

Porque é que o pH desce na fibra de coco com água macia?

O pH desce porque a água macia quase não traz tampão contra o ácido. O ácido é libertado pela própria raiz quando absorve catiões, ou seja, partículas de nutrientes com carga positiva, como o potássio ou o amónio. Na canábis este processo não foi medido em particular. Com água muito macia, a fibra de coco liga além disso nutrientes do adubo, e pode tornar-se visível uma carência de cálcio.

O solo mineral faz, pelo contrário, de tampão através dos seus locais de troca, que trazem sobretudo cálcio e magnésio. Muitos locais de troca armazenam nutrientes e travam mudanças rápidas do pH, mas para a terra de vaso à base de turfa isso não foi medido.

Anotar o pH do lixiviado em cada medição.
Com água muito macia, subir um pouco a quantidade de nutrientes, para que a fibra de coco não ligue toda a dose.
Como misturar ou tamponar água macia, explica o artigo sobre o cálculo da solução nutritiva.

A que atender na lã de rocha e em hidroponia?

A lã de rocha e a hidroponia quase não retêm nutrientes, mas a solução junto à raiz muda com a absorção e com o reabastecimento. A lã de rocha nova, uma placa feita de rocha fundida, traz um pH de cerca de 7,5 logo de início. Com nutrição apenas em nitrato, ficou em alface a pH 7,6 a 8,1, e a EC subiu. Nas culturas de estufa prepara-se a solução de rega a cerca de pH 5,3, para que junto à raiz se estabeleça um pH de 5,5 a 6,5 de forma estável. O pH é aí controlado através do amónio, uma das duas formas de azoto. Com pH demasiado baixo dá-se menos amónio, e com pH demasiado alto mais, no total 5 a 15 % do azoto. Para o pré-tratamento da lã de rocha na canábis não há valores medidos.

Em hidroponia as raízes estão suspensas na solução nutritiva, e o tanque é a solução junto à raiz. Em hidroponia fechada, em que a solução apenas é reabastecida, subiram o enxofre e o potássio, e também o boro e o cobre. O manganês, o molibdénio e o zinco desceram, pelo contrário, muito abaixo do fornecido, mas os valores nas folhas continuaram suficientes. Quando se reabasteceu com água da chuva entre duas trocas semanais, os teores subiram até ao dobro da mistura inicial.

Na lã de rocha, medir diariamente o pH e a EC no gotejador e no escoamento.
Se um nutriente se desviar no laboratório um quarto do alvo, alterar a solução de rega em 10 a 15 %.
Quanto amónio a canábis tolera, explica o artigo sobre o azoto.
Se o escoamento for reutilizado, usar água de rega pobre em sódio.
Em hidroponia, trocar regularmente toda a solução ou mandar analisar nutrientes individuais.
Com carência de ferro no tanque, verificar o quelato. Um quelato é uma molécula que mantém o ferro dissolvido.
Que quelato convém a que pH, explica o artigo sobre o ferro.

Quando ajuda uma análise foliar?

Uma análise foliar ajuda quando o pH e a EC estão certos e a planta mostra mesmo assim um problema. Mostra a absorção pela planta, enquanto a análise da solução mostra a oferta junto à raiz. Costuma amostrar-se a folha mais jovem totalmente desenvolvida, logo ao primeiro sintoma. Perante suspeita de excesso de ferro ou de manganês, as folhas de baixo afetadas também entram na amostra. A gérbera mostra quanto os andares de folhas podem diferir. Ali as folhas de baixo continham 3080 mg de ferro por quilograma de matéria seca, e a folha mais jovem desenvolvida apenas 752 mg por quilograma.

Um valor foliar sozinho pode enganar, porque sem fornecimento de azoto o azoto foliar da canábis ficou, em cima e em baixo, perto do controlo. Comparada com os intervalos de outro estudo, a amostra apontava para uma carência de cálcio ou de magnésio. Com a maturação, os valores foliares descem de qualquer modo, e por isso uma amostra da floração não corresponde a valores de referência da fase vegetativa. No fim da floração, as folhas de baixo amarelecem além disso mesmo com nutrição completa.

Mandar fazer uma análise foliar antes de grandes mudanças no plano de adubação.
Anotar o momento, a fase e o andar de folhas da amostra.
Com um quadro desigual, amostrar em separado as folhas de cima e as de baixo.
Ler em conjunto o aspeto das folhas, a solução e o valor foliar.
Os quadros individuais de carência estão descritos no artigo sobre carências e excessos de nutrientes.
O artigo sobre a senescência distingue o amarelecimento por envelhecimento da carência.